MBP(麦芽糖结合蛋白,Maltose Binding Protein)标签蛋白大小为40 kDa,由大肠杆菌K12的malE基因编码。MBP可增加在细菌中过量表达的融合蛋白的溶解性,尤其是真核蛋白。如果蛋白在细菌中表达,MBP可以融合在蛋白的N端或C端。MBP融合蛋白可通过交联淀粉亲和层析一步纯化,结合的融合蛋白可用10 mM麦芽糖在生理缓冲液中进行洗脱。如果要去除MBP融合部分,可用位点特异性蛋白酶切除。可用MBP抗体或表达的目的蛋白特异性抗体检测MBP标签标记的重组蛋白。由于MBP融合蛋白原核表达载体具有表达效率高,易于纯化等优点。在现代分子克隆中MBP常作为融合蛋白被广泛应用。本产品就是专门用于分离纯化MBP融合蛋白的试剂盒,它具有下列特点:

1. 一站式套装,含所需的直链淀粉和琼脂糖介质、溶液和层析柱,操作非常方便。

2. 提供 2 mL直链淀粉-琼脂糖介质,其载量为10 mg MBP蛋白/mL介质。

3. 采用麦芽糖温和洗脱,无去污剂和变性剂对蛋白活性的影响。

4. 本介质可以反复使用多次。


常温运输和保存,但介质需4℃保存,PMSF需要-20℃保存,有效期一年。


使用方法:

1. 将直链淀粉-琼脂糖介质充分混匀后,取适量加入到预放了一片筛板的层析柱中(介质用量需要根据MBP蛋白产量决定,其载量为10 mg MBP蛋白/mL介质,请根据实验需要取适量的介质加入层析柱中)。

2. 用5倍柱体积(柱体积指的是填料介质的体积,下同)自备去离子水洗柱,共3次。

3. 用5倍柱体积的新配的结合缓冲液洗柱,进行平衡,使填料介质处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

4. 4℃ 5000 g离心10分钟收集20 mL表达菌液,弃上清,将细胞沉淀(约100 mg)悬于2 mL冰冷的现配的细胞洗涤液中,4℃ 5000 g离心15分钟收集细胞沉淀后,再次悬于2 mL冰冷的细胞洗涤液中。(用不加诱导物的菌液做对照样

5. 制备细胞裂解物:

1) 如果所用载体不带MBP信号肽序列(如pMAL-c2)

a) 超声破碎细胞,功率30 W,保持细胞低温(0℃),直到在显微镜下看见绝大多数细胞破裂。(超声参数需根据仪器型号自行摸索,但裂解物必须不粘稠,否则会堵塞层析柱。)

b) 为使溶液澄清,向上述细胞洗涤液中加入35 uL PMSF(10 mg/mL)。

c) 4℃下13000-15000 g离心30分钟,以去除残留细胞和细胞碎片以防堵柱,收集上清样品,留样做 SDS-PAGE 电泳对照,其余样品用于纯化MBP融合蛋白,直接进入第6步。

2) 如果所用载体带MBP信号肽序列(如pMAL-p2)

a) 4℃ 5000 g离心15分钟收集细胞,沉淀悬于1 mL冰冷的现配的细胞裂解液中

6. 将样品加到平衡好的直链淀粉-琼脂糖介质中(保证目的蛋白与介质充分接触,以提高目的蛋白的回收率),收集流出液。

7. 用10-15倍柱体积的结合缓冲液(配方见上表)进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

8. 使用5-10倍柱体积的现配的麦芽糖洗脱液洗脱结合的融合蛋白,收集洗脱液(即目的蛋白组分)。

9. 将纯化得到的样品(包括流出液、洗杂液和洗脱液)以及原始样品使用SDS-PAGE检测纯化效果。

10. 填料介质清洗:依次使用3倍柱体积的结合缓冲液和5倍柱体积的去离子水平衡介质,再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4℃保存,防止填料被细菌污染。本介质可重复使用。

11. 用适当的蛋白酶切割融合蛋白释放靶蛋白。

1) 加入自备的凝血酶、肠激酶或Xa因子(根据融合蛋白中的位点选择)。每毫升介质中加入50单位的溶于1 mL PBS溶液的蛋白酶。颠倒离心管数次混匀,室温下振荡2-16小时。

2) 4℃以500 g离心5分钟,上清小心转移到新离心管中。

3) 用传统的层析方法或SDS-PAGE电泳分离靶蛋白和蛋白酶。